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바이오 의약품 품질의 새로운 기준 USP 665 - 고분자 부품 및 시스템의 화학적 안전성 평가

  바이오 의약품 품질의 새로운 기준 USP 665 고분자 부품 및 시스템의 화학적 안전성 평가 바이오 의약품 제조 공정이 과거 스테인리스 스틸 중심에서 싱글 유즈 시스템(Single-Use Systems, SUS)으로 급격하게 변화하면서 공정 중 안전성 확보가 최우선 과제로 떠올랐습니다. 이러한 산업적 흐름 속에서 미국 약전 위원회(USP)가 제시한 USP 665 가이드라인은 일회용 부품에서 유래할 수 있는 용출물(Extractables)에 대한 표준화된 시험법과 위험 평가 체계를 규정하고 있습니다. 오늘은 바이오 공정 전문가의 시각에서 USP 665의 핵심 내용과 산업계에 미치는 영향 그리고 글로벌 기업들의 대응 사례를 심도 있게 분석해 보겠습니다. USP 665의 등장 배경과 필요성 바이오 의약품은 분자 구조가 복잡하고 외부 환경 변화에 매우 민감합니다. 제조 과정에서 사용되는 플라스틱 백, 튜브, 필터, 커넥터 등 고분자 부품들은 약물 성분과 직접 접촉하게 되며 이 과정에서 화학 물질이 의약품으로 유입될 가능성이 존재합니다. 기존에는 USP 661.3과 같은 기준이 존재했으나 이는 일반적인 플라스틱 포장재에 초점이 맞춰져 있어 복잡한 바이오 공정 장비의 특성을 반영하기에는 한계가 있었습니다. USP 665는 의약품 제조 공정 중에 사용되는 모든 고분자 기반 장비와 부품을 대상으로 하며 특히 공정 용출물(Process Equipment Extractables, PEE) 관리에 특화되어 있습니다. USP 665의 핵심 구성 요소 및 시험 단계 USP 665는 단순히 실험 데이터를 나열하는 것이 아니라 위험 기반 접근 방식(Risk-based Approach)을 채택하고 있습니다. 공정 단계의 위험도에 따라 시험의 수준을 결정하는 것이 핵심입니다. 1단계 위험 평가 (Risk Assessment) 모든 부품을 동일한 강도로 시험하는 것은 비효율적입니다. USP 665는 부품이 약물과 접촉하는 시간, 온도, 용매의 특성, 그리고 해당 부품이 공정의 어느...

TFF 멤브레인 컷오프 사이즈(Cut off size) 선택 가이드

 

TFF 멤브레인 컷오프 사이즈(Cut off size) 선택 가이드

바이오 의약품 공정에서 TFF(Tangential Flow Filtration)는 농축(Concentration), 완충액 교환(Diafiltration) 등 핵심적인 역할을 수행하는 필수 기술입니다. 이 공정의 효율과 최종 제품의 품질은 멤브레인 선택, 특히 MWCO(Molecular Weight Cut-Off) 사이즈 결정에 크게 좌우됩니다. 단순한 경험에 의존하기보다는 과학적 원리와 실제 사례를 바탕으로 최적의 MWCO를 선택하는 것이 중요합니다. 이 글은 바이오공정 전문가의 관점에서 TFF 멤브레인 컷오프 사이즈를 선택하는 실질적인 기준과 노하우를 제시합니다.



MWCO: 단순히 분자량 컷오프를 의미하는가?

TFF 멤브레인의 MWCO는 Nominal Molecular Weight Limit(NMWL)로도 불리며, 특정 용질 분자량의 90% 이상을 막이 막아낼 수 있는 명목상의 분자량을 달톤(Da) 단위로 표기한 값입니다. 여기서 중요한 점은 이것이 절대적인 컷오프 기준이 아니라는 것입니다. 멤브레인의 공극 크기는 균일하지 않고 분포를 가지며, 용질 분자의 실제 모양, 크기, 전하, 농도, 그리고 용액의 pH와 이온 강도 같은 조건에 따라 실제 분리 효율은 달라집니다. 따라서 MWCO는 단지 멤브레인의 대략적인 분리 성능을 나타내는 지표로 이해해야 합니다.

TFF 멤브레인 컷오프 사이즈 선택의 핵심 원리

바이오 공정에서 TFF 멤브레인 컷오프 사이즈를 선택하는 데는 몇 가지 명확한 원칙이 있습니다. 이 원칙들은 회수율(Yield)과 공정 속도(Flux)라는 두 가지 핵심적인 목표를 동시에 고려하여 최적의 균형점을 찾는 과정입니다.

1. MWCO와 타겟 분자량의 상관관계

가장 기본적인 원칙은 분리하고자 하는 타겟 분자의 분자량보다 3배에서 6배 정도 낮은 MWCO의 멤브레인을 선택하는 것입니다.

  • 회수율을 최대로 할 경우: 타겟 분자의 손실을 최소화하려면 타겟 분자량의 4배에서 6배 낮은 MWCO를 선택하는 것이 좋습니다. 예를 들어, 분자량 150 kDa인 항체를 농축하려면 30 kDa 또는 50 kDa 멤브레인을 고려할 수 있습니다. MWCO가 낮을수록 타겟 분자가 막을 통과할 확률이 줄어들어 회수율이 높아집니다.

  • 공정 속도를 빠르게 할 경우: 빠른 공정 시간을 원한다면 타겟 분자량의 3배 정도 낮은 MWCO를 선택할 수 있습니다. MWCO가 높을수록 멤브레인의 투과도가 높아져 유속(Flux)이 빨라지기 때문입니다. 하지만 이 경우 타겟 분자 일부가 막을 통과하여 회수율이 낮아질 수 있는 트레이드오프가 발생합니다.

목표MWCO 선택 기준 (타겟 분자량의 배수)장점단점
높은 회수율4-6배 낮은 MWCO타겟 분자 손실 최소화, 높은 제품 회수율낮은 유속, 긴 공정 시간
빠른 공정 속도3배 낮은 MWCO높은 유속, 짧은 공정 시간타겟 분자 손실 가능성, 낮은 회수율

이러한 원칙은 일반적인 단백질이나 핵산 등의 농축 공정에 적용되며, 특히 고가의 바이오 의약품 생산에서는 회수율이 가장 중요한 지표이므로 낮은 MWCO를 선호하는 경향이 있습니다.

2. 분자 응집 및 점도 고려

고농도 바이오 의약품의 경우, 분자 간 상호작용으로 인해 분자 응집(Aggregation)이 발생하거나 용액의 점도가 급격히 높아질 수 있습니다. 이는 멤브레인 표면에 케이크 층(Concentration Polarization)을 형성하여 공정 유속을 저하시키는 주요 원인이 됩니다. 이러한 상황에서는 타겟 분자의 응집체 크기를 고려하여 MWCO를 선택해야 합니다. 예를 들어, 150 kDa 항체 응집체가 300 kDa 이상의 분자량을 가질 수 있다면, 응집체를 막기 위해 더 낮은 MWCO를 선택하는 것이 오히려 불리할 수 있습니다. 멤브레인 공극을 막아 유속을 더 떨어뜨리기 때문입니다.

3. 분리 대상 물질의 특성

TFF 공정은 크게 두 가지 목적으로 사용됩니다.

  • 농축(Concentration): 타겟 분자(단백질, 바이러스 등)는 잔류물(Retentate)로 남기고, 물이나 작은 용질(염분, 버퍼 성분)은 투과물(Permeate)로 제거하는 과정입니다. 이때는 타겟 분자를 확실히 막아낼 수 있는 낮은 MWCO가 유리합니다.

  • 완충액 교환(Diafiltration): 타겟 분자는 잔류물로 남기고, 용액 내의 불순물(버퍼 성분, 저분자 오염물)을 제거하고 새로운 버퍼로 교환하는 과정입니다. 이 경우에도 타겟 분자의 손실을 막는 것이 중요하지만, 불순물은 최대한 빠르게 제거해야 합니다. 따라서 불순물의 분자량과 타겟 분자의 분자량 차이가 클수록 더 넓은 MWCO 범위에서 선택이 가능해집니다. 예를 들어, 150 kDa 항체와 1 kDa의 버퍼 성분을 분리하는 경우, 30 kDa 멤브레인도 효율적인 완충액 교환이 가능합니다.

실제 바이오 의약품 공정에서의 MWCO 선택 사례

다양한 바이오 의약품들은 그 특성에 따라 최적의 TFF MWCO가 달라집니다. 실제 기업들의 사례를 통해 구체적인 멤브레인 선택 전략을 살펴보겠습니다.

1. 단일클론 항체(mAb) 농축

  • 타겟 물질: 단일클론 항체 (IgG), 분자량 약 150 kDa.

  • 일반적인 선택: 30 kDa 또는 50 kDa MWCO 멤브레인.

  • 사례: Cytiva, MilliporeSigma 같은 주요 TFF 멤브레인 제조사들은 IgG 농축에 30 kDa PES(Polyethersulfone) 또는 RC(Regenerated Cellulose) 재질의 멤브레인을 권장합니다. 이는 150 kDa 분자량의 약 5배 낮은 MWCO로, 타겟 물질의 손실을 최소화하면서도 안정적인 유속을 확보할 수 있는 검증된 선택입니다. Sartorius는 항체 생산 공정에서 30 kDa MWCO 중공사막(Hollow Fiber)을 제공하여 높은 수율을 보장합니다.

2. 바이러스 벡터(Viral Vector) 정제

  • 타겟 물질: AAV(Adeno-Associated Virus), 렌티바이러스(Lentivirus) 등. 분자량은 수백 kDa에서 수백만 kDa에 이르는 거대 복합체입니다.

  • 일반적인 선택: 100 kDa 또는 300 kDa MWCO 멤브레인.

  • 사례: 유전자 치료제 개발 시 사용되는 AAV는 크기가 약 20-25 nm로, 분자량으로 환산하기 어렵지만 매우 큰 입자입니다. MilliporeSigma와 Sartorius 등은 AAV 농축 및 완충액 교환에 100 kDa 또는 300 kDa 멤브레인을 사용한다고 보고합니다. 이는 일반적인 단백질보다 훨씬 큰 MWCO를 사용하는데, 그 이유는 바이러스 벡터가 전단 응력에 민감하고, 세포 잔해물이나 작은 불순물을 효과적으로 제거하면서도 입자의 막힘(Fouling)을 최소화하기 위함입니다.

3. 엑소좀(Exosome) 분리

  • 타겟 물질: 엑소좀, 크기 30-150 nm의 나노 입자.

  • 일반적인 선택: 100 kDa 이상 또는 0.22 µm 마이크로필터.

  • 사례: 엑소좀은 크기가 매우 다양하고 전단 응력에 취약합니다. TFF는 엑소좀 분리에도 활용되는데, 연구 목적에 따라 엑소좀을 통과시키거나 막는 용도로 MWCO를 선택합니다. 일반적으로 엑소좀을 농축할 때는 100 kDa 이상의 MWCO를 사용하거나, 더 큰 마이크로필터(0.1-0.22 µm)를 사용해 잔여물로 남기는 방식이 선호됩니다.

MWCO 선택 시 추가 고려사항

MWCO 외에도 멤브레인 선택 시 다음과 같은 요인들을 종합적으로 고려해야 합니다.

  1. 멤브레인 재질(Material): PES, RC, PVDF(Polyvinylidene Fluoride) 등이 주로 사용됩니다. 각 재질은 친수성, 단백질 흡착률, 내화학성 등이 달라 공정 용도에 맞게 선택해야 합니다. 예를 들어, 단백질 흡착을 최소화하려면 RC나 저흡착성 PES 멤브레인이 유리합니다.

  2. 포맷(Format): 평판형 카세트(Flat Sheet Cassette)와 중공사막(Hollow Fiber)이 있습니다.

    • 카세트: 높은 전단 응력(Shear Stress)에 적합하며, 높은 압력으로 고농도 공정에 유리합니다. 스케일업(Scale-up)이 용이하다는 장점이 있습니다.

    • 중공사막: 낮은 전단 응력에 민감한 물질(예: 바이러스 벡터, 세포)에 적합합니다. 유로가 넓어 높은 점도의 용액을 처리하기에 용이합니다.

  3. 공정 조건: 유속(Flow Rate), 압력(Transmembrane Pressure, TMP), 온도, pH 등 공정 변수들은 멤브레인 성능에 직접적인 영향을 미칩니다. 특히 TMP는 유속을 조절하는 주요 인자이므로 최적의 값을 찾아야 합니다.

결론: 실험을 통한 최적화의 중요성

TFF 멤브레인 MWCO 선택은 이론적인 가이드라인을 바탕으로 하지만, 실제 공정에서는 반드시 소규모 실험을 통해 최적의 조건을 찾아야 합니다. 다양한 MWCO 멤브레인을 사용하여 타겟 물질의 회수율과 공정 유속을 평가하는 Retention Test는 필수적인 과정입니다. 이를 통해 목표하는 회수율과 공정 효율을 모두 만족시키는 최적의 멤브레인을 결정할 수 있습니다.

바이오 의약품의 특성은 제각각이며, 미세한 공정 조건 변화에도 결과가 달라질 수 있습니다. 따라서 이론적 지식과 더불어 현장에서의 실제 경험과 데이터가 뒷받침될 때 비로소 성공적인 TFF 공정을 구축할 수 있습니다. 이것이 바로 바이오공정 전문가의 역량입니다.

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